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動物行為實驗總結(jié)丨不同神經(jīng)記錄下的清醒小鼠頭部固定的范式應(yīng)用

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清醒小鼠頭部固定是一種常用技術(shù)用于在動物保持清醒狀態(tài)下進(jìn)行高精度的神經(jīng)記錄(如雙光子成像、虛擬現(xiàn)實、寬場成像、在體電生理記錄等),同時避免運動偽影。

多電極陣列(如Neuropixels探針)能夠以高時間分辨率對大量單個神經(jīng)元進(jìn)行電生理記錄。通過使用這類探針可在同一動物體內(nèi)同時測量功能上相互關(guān)聯(lián)但解剖位置不同的多個腦區(qū)的神經(jīng)活動。然而,在小鼠等小型動物中使用多個探針需要移除相當(dāng)大一部分顱骨,同時必須盡量減少組織損傷并在記錄過程中保持大腦穩(wěn)定。


Fig1 頭架與顱骨開窗植入術(shù)

顱骨開窗:

選項 A(急性記錄):暫不開窗,僅預(yù)留區(qū)域,記錄當(dāng)天再開。

選項 B(慢性窗口):

在頭架中央開口內(nèi),用精細(xì)顱骨鉆(<0.5 mm)緩慢磨出一個大范圍薄層顱骨窗(如 4×4 mm2),或多個小孔(用于多探針)。接近硬腦膜時改用鑷子或針尖輕柔剝離殘余骨片,避免損傷硬腦膜或引起出血。若需長期成像,可保留完整硬腦膜;若用于電極插入,可小心移除。

Neuropixels 多探針清醒小鼠記錄

階段一:頭架與可拆卸玻璃蓋片植入

術(shù)前準(zhǔn)備:

小鼠(通常為成年 C57BL/6 或轉(zhuǎn)基因品系)經(jīng)適應(yīng)性訓(xùn)練,熟悉抓握和輕度約束。術(shù)前給予鎮(zhèn)痛藥(如布洛芬或卡洛芬)和抗生素。使用異氟烷維持麻醉,配合眼膏防干。

立體定位手術(shù):

固定小鼠于立體定位儀,剃毛、消毒頭皮。沿中線切開皮膚,剝離筋膜,暴露顱骨。清理顱骨表面(H?O? 或生理鹽水),確保干燥無出血。

頭架固定:

使用牙科水泥將定制金屬或3D打印頭架牢固粘附于顱骨(覆蓋頂骨及部分額骨)。

頭架中央預(yù)留一個大開口(直徑約 8–10 mm),用于后續(xù)多探針插入。

植入可拆卸玻璃蓋片:

在頭架開口處覆蓋一塊圓形玻璃蓋片,用少量快速固化膠(如 UV 膠)臨時固定。蓋片可在記錄前移除,避免阻礙探針插入。

術(shù)后恢復(fù):

縫合皮膚邊緣,給予術(shù)后鎮(zhèn)痛 48–72 小時?;謴?fù)期 ≥7 天,并進(jìn)行清醒頭部固定適應(yīng)訓(xùn)練(每天 10–30 分鐘,持續(xù) 3–5 天)。

階段二:探針精確定位與成像窗口安裝(記錄當(dāng)天)

移除玻璃蓋片:

輕柔取下臨時玻璃蓋片,暴露完整顱骨窗區(qū)域。

顱骨開窗(關(guān)鍵步驟):

使用精細(xì)顱骨鉆(<0.5 mm tip)在目標(biāo)腦區(qū)上方小心磨薄或打孔(通常 4–6 個孔,直徑 0.5–1 mm),避開主要血管??孜桓鶕?jù)目標(biāo)腦區(qū)坐標(biāo)預(yù)先設(shè)計。用 PBS 沖洗碎屑,保持硬腦膜完整(或輕柔移除)。

安裝帶孔塑料成像窗口:

放置一個定制的帶孔塑料環(huán)(如聚醚醚酮 PEEK 或 Delrin 材料),孔位與探針路徑對齊。該窗口可穩(wěn)定腦組織、減少腦搏動,并防止探針插入時腦脊液流失。

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階段三:清醒狀態(tài)下探針插入與記錄

頭部固定:

將小鼠輕柔放入行為裝置,用頭架夾具固定頭部,身體置于泡沫墊或跑步球上。

探針裝載與定位:

將最多 6 根 Neuropixels 探針(如 NP 1.0 或 2.0)裝載到高精度微操縱器

通過顯微鏡或攝像頭對準(zhǔn)顱骨開孔,緩慢下降探針至硬腦膜表面。

探針插入:

以 10–50 μm/s 的速度緩慢插入探針至目標(biāo)深度。插入過程中小鼠應(yīng)保持安靜(可通過獎勵或習(xí)慣化實現(xiàn))。

電生理記錄:

連接探針開始采集寬頻信號(通常 30 kHz 采樣率)。同步記錄行為視頻、跑步球運動、視覺刺激等。

階段四:數(shù)據(jù)質(zhì)量控制與探針回收

實時監(jiān)測噪聲水平、單位數(shù)量、LFP 特征,確保信號質(zhì)量。記錄結(jié)束后緩慢回撤探針,清潔并妥善保存。

關(guān)鍵優(yōu)化點:

顱骨開窗面積大但精準(zhǔn):平衡多探針通路與腦穩(wěn)定性。

硬腦膜處理:保留可減少炎癥,移除可降低插入阻力,需根據(jù)經(jīng)驗選擇。

清醒適應(yīng)訓(xùn)練:小鼠必須平靜。

虛擬現(xiàn)實模擬相關(guān)范式

頭部固定小鼠能夠?qū)崿F(xiàn)對神經(jīng)元活動的高分辨率監(jiān)測并結(jié)合對環(huán)境刺激的精確控制。虛擬現(xiàn)實可用于在頭部固定狀態(tài)下模擬運動時的視覺體驗,而一種低慣性的、可浮動的真實物理環(huán)境即“移動家園籠”(Mobile Home Cage, MHC)可調(diào)動更多感官模態(tài),為復(fù)雜行為任務(wù)提供更豐富的實驗場景。


Fig2 基于氣浮技術(shù)的清醒行為記錄系統(tǒng)

(a) 頭部固定裝置:氣浮支撐的碳纖維容器置于空氣分配平臺上的頭部固定橋下方。

(b) 頭部固定裝置示意圖(左):小鼠頭部被固定在橋上,但可通過自身運動帶動下方容器自由移動;實際照片顯示裝有泡沫T型迷宮插件的容器(右)。

(c) 小鼠在從飼養(yǎng)籠轉(zhuǎn)移至頭部固定裝置過程中,用法蘭絨布包裹以減少應(yīng)激。

(d) 頭部固定夾持器以37°傾角安裝,符合小鼠自然姿勢。

(e) 連續(xù)多日限水對小鼠體重的影響:藍(lán)色表示自由飲水期,灰色表示限水期。

(f) 在連續(xù)多日的15分鐘實驗中,每只小鼠完成的試驗次數(shù)(即圓形跑道的圈數(shù))

采用立體定位手術(shù)在實驗前一周為小鼠植入頭件。手術(shù)中,小鼠經(jīng)異氟烷麻醉后固定于立體定位儀,在Bregma與Lambda之間切開皮膚暴露顱骨,用3%過氧化氫清潔表面并以Vetbond膠將皮膚邊緣固定于顱骨以減少術(shù)后收縮。隨后輕劃顱骨以增強粘附力。在背側(cè)海馬上方鉆取直徑1.5 mm的顱骨開窗電生理實驗中該窗口以瓊脂封堵;最后,以牙科丙烯酸樹脂將頭板及導(dǎo)管整體穩(wěn)固于顱骨。術(shù)后小鼠先單籠飼養(yǎng)48小時,再恢復(fù)至常規(guī)雙籠環(huán)境繼續(xù)休養(yǎng)3–5天。從術(shù)后第5天起,開始為期數(shù)日的清醒頭部固定適應(yīng)訓(xùn)練。每日進(jìn)行15分鐘手法接觸:通過籠內(nèi)熟悉的紙筒隧道溫和取出小鼠,用手掌托持并允許其探索;隨后將其放入Mobile Home Cage(MHC)系統(tǒng)的碳纖維圓形arena中自由活動5分鐘。當(dāng)小鼠能主動返回實驗員手掌后,次日引入轉(zhuǎn)移布巾訓(xùn)練將其置于布巾上反復(fù)包裹/展開數(shù)次(每次<20秒)。達(dá)到穩(wěn)定配合后,正式進(jìn)入頭部固定階段:小鼠被布巾包裹后置于MHC系統(tǒng)中,該系統(tǒng)由鋁制支架和氣浮支撐的超輕碳纖維容器(直徑34 cm)組成。頭板被夾緊于頭柱,移除布巾后啟動空氣壓縮機(噪音約50 dB),調(diào)節(jié)氣壓使平臺懸浮高度剛好容許一張紙通過。實驗中可通過更換泡沫插件切換跑道構(gòu)型(如圓形或T迷宮)并在周圍設(shè)置條紋、斑點等視覺線索輔助空間定位。所有頭部固定實驗連續(xù)多日進(jìn)行,單次時長不超過20分鐘,確保動物在清醒、低應(yīng)激狀態(tài)下完成神經(jīng)記錄或行為任務(wù)。

雙光子成像中小鼠頭部固定

對清醒小鼠在雙光子顯微鏡下的高分辨率、長期穩(wěn)定成像:

1. 頭架手術(shù)植入

成年小鼠(8–12周齡)經(jīng)異氟烷麻醉后,固定于立體定位儀。沿顱骨中線切開皮膚,將定制鈦合金頭板(其連接桿位于顱骨后方并抬高,避免遮擋小鼠±59.3°水平與±47°垂直視野)以快干膠初步粘附,并用牙科丙烯酸樹脂牢固固定于頂骨與額骨。若需長期成像,在目標(biāo)腦區(qū)(如視覺皮層或海馬)上方鉆取直徑約3–5 mm的顱骨開窗,小心保留或移除硬腦膜,并覆蓋玻璃蓋片密封。術(shù)后給予鎮(zhèn)痛藥,單籠恢復(fù)48小時后轉(zhuǎn)為常規(guī)飼養(yǎng),恢復(fù)期不少于5天。


2. 清醒適應(yīng)與行為訓(xùn)練

從術(shù)后第5天起,每日進(jìn)行10–15分鐘的溫和接觸與頭部固定適應(yīng)訓(xùn)練:通過隧道或手掌轉(zhuǎn)移小鼠,逐步引入包裹布巾和碳纖維跑輪環(huán)境,使其在無應(yīng)激狀態(tài)下習(xí)慣被固定于頭柱上并能在低慣性跑輪上自由運動。訓(xùn)練持續(xù)3–5天,直至小鼠在固定狀態(tài)下呼吸平穩(wěn)、主動探索且無掙扎行為。

3. 頭部固定與雙光子成像對準(zhǔn)

實驗當(dāng)日,將小鼠輕柔包裹后置于雙光子顯微鏡的行為平臺,通過夾具將頭板牢固夾持于預(yù)校準(zhǔn)的頭柱上。系統(tǒng)采用統(tǒng)一的“小鼠–屏幕”幾何構(gòu)型確保刺激顯示器位于標(biāo)準(zhǔn)視角范圍內(nèi)。為實現(xiàn)跨日精準(zhǔn)復(fù)位,所有成像系統(tǒng)均基于一個集成頭架接口的校準(zhǔn)標(biāo)尺進(jìn)行配準(zhǔn):該標(biāo)尺永久嵌入頭架內(nèi),位于目標(biāo)成像深度且垂直于光軸。

4. 機械穩(wěn)定性驗證

系統(tǒng)設(shè)計要求成像區(qū)域沿光學(xué)軸(z軸)總位移≤4?μm。通過計算機仿真與臺架測試(懸掛20–100?g砝碼)確認(rèn)頭架在0.5?N負(fù)載下中心撓度≤3.2?μm?;铙w測試中,在小鼠主動奔跑期間實時監(jiān)測顱窗位移,結(jié)果顯示最大瞬時位移≤2.2?μm,全程總位移≤3.3?μm,完全滿足雙光子鈣成像對穩(wěn)定性的嚴(yán)苛要求。

在清醒、行為活躍狀態(tài)下對同一神經(jīng)元群體進(jìn)行功能成像

實驗步驟:

本步驟旨在以最小化腦組織移動的方式植入用于頭部固定的頭板,必須嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作以防感染;建議使用5–6周齡小鼠(雄雌均可),且進(jìn)行膜片鉗記錄時年齡不超過12周,因年長動物顱骨增厚、腦組織特性改變易導(dǎo)致開顱困難、記錄成功率下降及接入電阻升高。

手術(shù)開始前以異氟烷麻醉小鼠,通過呼吸頻率和足趾夾捏反射確認(rèn)麻醉深度,雙眼涂眼科凝膠防干燥,置于加熱墊保溫并將頭部牢固固定于立體定位儀。隨后剃除頭頂被毛、消毒,并在切口周圍皮下注射局部鎮(zhèn)痛藥(如利多卡因/羅哌卡因)。沿顱骨輪廓切除圓形皮膚,徹底刮除頂骨與間頂骨表面及顱縫處的骨膜軟組織(殘留會導(dǎo)致頭板松動;可用生理鹽水濕潤以助識別),再用組織粘合劑封閉皮膚邊緣。待顱骨干燥后,輕磨骨面(避開目標(biāo)區(qū)),沿顱縫涂3–4層組織粘合劑粘合骨片至無相對移動并覆蓋其余骨面。接著用組織粘合劑初步固定頭板,再以牙科水泥牢固包埋,覆蓋所有暴露顱骨(僅留目標(biāo)腦區(qū))并在該區(qū)域周圍構(gòu)筑1–2 mm高記錄腔壁(用于放置AgCl接地電極及微電極通道);

若頭板為金屬須確保腔內(nèi)金屬完全被水泥覆蓋以實現(xiàn)電絕緣。最后以Kwik-Cast硅膠密封開顱區(qū),皮下注射全身鎮(zhèn)痛藥并在術(shù)后48小時內(nèi)持續(xù)鎮(zhèn)痛、提供濕糧。術(shù)后進(jìn)入行為訓(xùn)練與習(xí)慣化階段:每日將小鼠頭部固定于實驗裝置中最多1小時,直至其表現(xiàn)規(guī)律運動(如跑輪奔跑)和舒適體態(tài)(尾巴下垂、無身體扭曲),期間可同步訓(xùn)練特定頭部固定行為任務(wù)。

寬場成像頭部固定

首先,在實驗前至少7天完成慢性顱骨窗植入手術(shù)確保小鼠(通常為5–8周齡C57BL/6J或表達(dá)GCaMP等鈣指示劑的轉(zhuǎn)基因品系)充分恢復(fù);從術(shù)后第3–5天起開始行為習(xí)慣化訓(xùn)練,每日用法蘭絨布溫和包裹小鼠進(jìn)行轉(zhuǎn)移并逐步引入短時間(5–10分鐘)的頭部固定于行為平臺,隨后逐漸延長至30–60分鐘,直至小鼠表現(xiàn)出安靜呼吸、自發(fā)跑輪運動、尾巴自然下垂且無掙扎或過度理毛等應(yīng)激行為,通常需5–7天完成適應(yīng)。實驗當(dāng)日,將實驗室環(huán)境控制在安靜、柔和光照和22–24°C室溫條件下,提前開啟寬場成像系統(tǒng)、行為記錄設(shè)備(如跑輪旋轉(zhuǎn)編碼器、眼動追蹤及全身攝像系統(tǒng))以及視覺刺激顯示器并進(jìn)行預(yù)熱與校準(zhǔn)。輕柔地從飼養(yǎng)籠中取出小鼠,用法蘭絨布包裹以減少應(yīng)激迅速轉(zhuǎn)移至成像平臺。將小鼠頭部牢固夾持于標(biāo)準(zhǔn)化頭柱夾具中,確保鈦合金頭板與夾具完全貼合、無松動;同時調(diào)整身體支撐結(jié)構(gòu)(如泡沫墊或氣浮式移動家籠),使小鼠可在固定狀態(tài)下自由奔跑,尾部自然下垂。校準(zhǔn)“小鼠-屏幕”幾何關(guān)系(距離15–20 cm,雙眼正對中心)確保視角一致。以皮層血管為參照對焦同步記錄跑輪、行為視頻及刺激。


動物頭部固定行為實驗裝置核心在于實現(xiàn)清醒、行為活躍狀態(tài)下穩(wěn)定、長期的神經(jīng)記錄或成像,同時通過受控的運動方式維持動物自然的感覺-運動交互。與自由活動范式不同,該方法通過固定頭部來提供高分辨率神經(jīng)技術(shù)(如雙光子顯微鏡、電生理記錄或?qū)拡龀上瘢┧匦璧臋C械穩(wěn)定性,同時允許動物通過自由旋轉(zhuǎn)的跑輪、氣浮球面平臺或線性軌道等方式主動參與行為任務(wù)。

關(guān)鍵設(shè)計原則:

1. 剛性頭部固定:通過手術(shù)將定制頭板牢固植入顱骨,再與實驗平臺上的夾具精確對接,確保在數(shù)小時乃至數(shù)周的實驗中頭部位移控制在微米級,滿足光學(xué)或電生理記錄對穩(wěn)定性的嚴(yán)苛要求。

2. 自然運動保留:盡管頭部被固定,大鼠仍可通過四肢驅(qū)動低慣性跑輪或在氣浮球上行走,產(chǎn)生真實的本體感覺、觸覺和運動輸出,從而維持接近自然狀態(tài)下的神經(jīng)動力學(xué)(如運動調(diào)制、空間導(dǎo)航相關(guān)活動)。

3. 多模態(tài)行為整合:系統(tǒng)通常集成視覺/聽覺刺激呈現(xiàn)、舔水獎勵裝置、觸須刺激器、眼動追蹤及全身視頻監(jiān)控,支持復(fù)雜感知-決策-動作閉環(huán)任務(wù)(如辨別任務(wù)、工作記憶或運動學(xué)習(xí))。

4. 長期可重復(fù)性:借助標(biāo)準(zhǔn)化頭架接口和跨日空間配準(zhǔn)(例如使用校準(zhǔn)標(biāo)尺或血管圖譜),可在同一動物、同一腦區(qū)進(jìn)行連續(xù)數(shù)周至數(shù)月的縱向觀測,適用于發(fā)育、學(xué)習(xí)、疾病進(jìn)展或干預(yù)療效研究。

總結(jié)

動物頭部固定行為裝置并非簡單限制動物自由,而是一種平衡了實驗精度與行為生態(tài)效度的先進(jìn)神經(jīng)科學(xué)平臺,為在細(xì)胞或環(huán)路水平解析清醒大腦如何在主動行為中處理信息提供了強大工具。

文獻(xiàn)引用:

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  • Wienisch, M., Blauvelt, D.G., Sato, T.F., Murthy, V.N. (2011). Two-Photon Imaging of Neural Activity in Awake, Head-Restrained Mice. In: Fellin, T., Halassa, M. (eds) Neuronal Network Analysis. Neuromethods, vol 67. Humana Press. https://doi.org/10.1007/7657_2011_18

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2026-01-06 07:05:03
人狂必有禍!被何慶魁罵“白眼狼”的閆學(xué)晶,狐貍尾巴藏不住了

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小張帥
2026-01-06 09:01:22
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懂球帝
2026-01-05 19:27:31
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手工制作阿殲
2026-01-06 09:35:48
中國人討論美國“斬殺線”,讓“精神美國人”集體破防

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郎言志
2026-01-05 09:22:04
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界面新聞
2026-01-05 17:09:16
2026-01-06 10:39:00
腦聲常談 incentive-icons
腦聲常談
專注動物神經(jīng)科學(xué)與行為學(xué)實驗
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